La identificación del agente causante de abortos en ovejas y cabras es esencial para aplicar medidas de control eficaces. En el caso de Chlamydia abortus, un diagnóstico correcto depende de actuar con rapidez y conocer qué muestras son las más indicadas y cuándo deben recogerse.
¿Qué nos puede hacer sospechar de una infección por C. abortus?
– Abortos al final de gestación
– Corderos o cabritos débiles
– Mortalidad neonatal
– Ausencia de otros signos en animales adultos
– Placentitis necrótica
Estos signos pueden ser indicativos de una infección por C. abortus, pero otros patógenos pueden causar sintomatología similar, como Salmonella, Coxiella o Toxoplasma.
Siempre será necesario confirmar en el laboratorio el patógeno involucrado.
Recomendaciones para un diagnóstico adecuado: ¿Qué muestras debemos tomar?
– Placenta: es la muestra de elección. Intentar recoger las zonas lesionadas para un correcto diagnóstico.
– Feto abortado: Puede enviarse el feto entero. Las muestras más útiles son la lana húmeda, contenido del abomaso y fragmentos de órganos internos.
– Hisopos vaginales: En hembras que hayan abortado recientemente (24–72 horas), los hisopos vaginales son útiles cuando no se dispone de placenta o feto.
– Suero sanguíneo: se debe tomar después del aborto o parto, cuando se produce la seroconversión (aumento de anticuerpos).
La toma de muestras se debe realizar lo antes posible para aumentar las posibilidades de detección
¿Cuáles son las mejores técnicas?
PCR: es la más recomendada por su alta sensibilidad, especificidad y rapidez. El momento de la toma de muestras es crítico. La mayor excreción de Chlamydia ocurre en las primeras horas tras el aborto. Si la muestra se recoge tarde o está degradada, existe riesgo de falsos negativos.
Si es posible, la PCR debe ser la primera elección
ELISA: Permite detectar anticuerpos frente a C. abortus. Generalmente, dentro de los 3 meses posteriores al aborto se produce un aumento de anticuerpos, y en este momento pueden ser detectables.
| Método | Objetivo | |
| Confirmar patógeno | Prevalencia/vigilancia | |
| PCR | +++ | ++ |
| ELISA | ++ | +++ |
| Fijación del complemento | + | + |
| Inmunohistoquímica | ++ | + |
| Tinción de frotis | + | – |
La serología tiene algunas limitaciones. Por ejemplo, no es útil en animales vacunados, al no ser posible diferenciar anticuerpos naturales de vacunales.
ELISA también puede emplearse para el monitoreo de la enfermedad, para evaluar la circulación del patógeno.
Consideraciones importantes para el diagnóstico
- Enviar >1 muestra
- Recoger de diferentes animales
- Evitar contaminación al recoger la muestra
- Enviar lo antes posible (24 h)
- Las muestras deben ir refrigeradas o congeladas
- Combinar diferentes técnicas para aumentar posibilidades de detectar patógenos
- Usar equipo de protección personal (guantes, mascarilla), ya que muchos patógenos son zoonóticos.
Conclusiones
El diagnóstico debe realizarse lo antes posible para implementar la mejor estrategia de control, como por ejemplo la vacunación del rebaño.
Una toma de muestras adecuada y el uso de técnicas fiables, aumenta las posibilidades de detectar el patógeno
Artículo escrito por:
Tania Perálvarez Puerta. Global Product Manager, Small Ruminants Franchise – HIPRA
Referencias:
Chapter 3.7.5 Enzootic abortions of ewes (Ovine Chlamydiosis). Ovine terrestrial Manual 2018
